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免疫組化檢測常用技巧事項

 免疫組化,即免疫組織化學檢測,是病理診斷中一種常用的檢測手段。即對送檢的標本進行切片、染色,進而根據化學反應使標記抗體的顯色劑顯色,以此來確定組織細胞內的抗原,對其進行定位、定性及定量的研究。在免疫組化中,要想不出現無染色、高背景、非特異性染色等問題,取得滿意的實驗結果。檢測常見注意事項及小技巧總結如下:

1、組織脫水,透明 :時間不能太長,否則在切片時容易碎片,切不完整。
2 、切片時展片: 有些組織在切片后難以在水中展開,這時可適當地在水中加入幾滴乙醇。
3、烤片: 60℃ 30分鐘或37℃過夜,溫度太高或時間太長,抗原容易丟失。
4、蠟塊及切片的保存: 最好在4℃保存。
5、脫片問題 : Poly-L-Lysine(多聚賴氨酸)為目前免疫組化 染色工作中最常用的一種防脫片劑,6ml的多聚賴氨酸溶液可按1:10稀釋成60ml的工作液,適合于需要酶消化、微波、高溫高壓的防脫片處理。如不行,可用雙重處理(APES和Poly-L-Lysine)的切片。在以上兩種條件都行不通的情況下,可用如下方法:切片在脫蠟前,放在APES 1:50 丙酮溶液中浸泡3分鐘,晾干,即可進行下一步。

6、抗體稀釋: 應遵循“現用現配”的原則,對于PBS稀釋的抗體一定要當天使用。

7、背景高: 在抗體濃度、反應時間、反應溫度等合適的條件下,如果背景依舊高,可采用含1‰ Tween20的PBS洗,特別是在顯色之前要多洗。
8、返藍: 在蘇木素復染后,可用堿性緩沖液(如PBS)或Na2HPO4的飽和溶液返藍。
9、顯色: 一定要在顯微鏡下觀察,注意控制背景。

10、在整個操作過程中,切片千萬不能干燥,否則會有非特異性染色。

 

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